内容发布更新时间 : 2024/5/7 0:49:08星期一 下面是文章的全部内容请认真阅读。

5.标本采集步骤： 5.1 部位：

5.1.1左下腹脐与骼前上棘连线的中、外1/3 交点。

5.1.2脐与耻骨联合连线中点上方1.0 厘米，偏左或偏右1.5 厘米处。

5.1.3侧卧位，在脐水平与腋中线之延长线相交处。此处常用于诊断性穿刺。 5.1.4少量积液，尤其有包裹性分隔时，须在B 超指导下定位穿刺。 5.2方法：

5.2.1术前须排尿以防穿刺损伤膀胱。

5.2.2取坐位靠背椅上，衰弱者可取半卧位、平卧位或侧卧位。

5.2.3常规消毒，戴无菌手套，覆盖消毒洞巾，自皮肤至壁层腹膜以2％利多卡因作局部麻醉。

5.2.4术者左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针经麻醉处垂直刺入腹壁，待针尖抵挡感突 然消失时，示针尖已穿过壁层腹膜，即可抽取腹水，计量并留样送检。诊断性穿刺，可 直接用20ml或50ml注射器及适当针头进行；大量放液时，可用8号或9号针，并于针 座接一橡皮管接容器。并留取标本送检,做培养时应用无菌操作法留标本。

5.2.5放液后拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，以手指压迫数分钟，再用胶布固定。大量放 液后，需束以多头腹带，以防腹压骤降。内脏血管扩张引起血压下降或休克。 6.标本运输步骤：

6.1标本应立即送检，有条件的可低温条件2～8℃运输，微生物检验标本不应置于冰箱 内，以免细菌死亡而使培养阴性。

6.2送检标本应在标本瓶上贴好标本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型 必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。 6.3标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。

6.4将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、 患者或环境的方式运送到实验室。

6.5标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。 7.注意事项：

7.1浆膜腔积液（腹水）标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名 和检验项目，明确标本要求。

7.2术中严密观察患者，如有头晕、心悸、脉搏增快及面色苍白等，应立即停止操作， 并做适当处理。

7.3放液不易过快、过多，肝硬化患者一次放液一般不超过3000ml，过多放液可诱发肝 性脑病和电解质紊乱。

7.4放腹水时若流出不畅，可将穿刺针稍作移动或稍变换体位。 7.5术后嘱患者平卧、并使穿刺针孔位于上方以免腹水漏出。

7.6放液前、后均应测量腹围、脉搏、血压、检查腹部体征，以观病情变化。 7.7有肝性脑病先兆，结核性腹膜炎粘连包块、包虫病及卵巢囊肿者禁忌穿刺。 7.8收集标本后，为防止细胞服变性出现凝固或细菌破坏溶解等，必须立即送检。

8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原 因并告知送检科室，必要时重新采样检验。

十一、骨髓采集运输作业指导书

1.目的：抽取骨髓标本以做骨髓细胞学检查。

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2.适用范围：适用于本科做骨髓细胞学检查的骨髓标本采集。

3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱 布、无菌棉签、骨髓穿刺针、手消毒液、利器盒、手套、口罩、载玻片等。 4.检验申请单填写要求：

4.1检验申请单必须用钢笔或签字笔进行填写，使用正楷字，字迹清楚，不得涂改，如 需改动，只能在改动处进行划改，不能在原字上涂改使原字迹模糊或消失。 4.2填写内容包括：

4.2.1一般信息: 受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、申请医生或采样者签名等。

4.2.2其他检查结果：血常规检查结果（必填）；影像学检查结果；B 超检查结果等。 5.标本采集步骤： 5.1 部位：

5.1.1骼前上棘穿刺点，在骼前上棘后1～2 厘米。

5.1.2髂后上棘穿刺点，位于骶椎两侧，臀部上方突出的部位。

5.1.3胸骨穿刺点，位于胸骨柄或胸骨体相当于第1、2 肋间隙位置。 5.1.4腰椎棘突穿刺点，位于腰椎棘突突出处。 5.2方法：

5.2.1常规消毒，戴无菌手套，覆盖无菌洞巾，用2％利多卡因作局部皮肤，皮下及骨膜麻醉。

5.2.2将穿刺针固定器固定在适当的长度(胸骨穿刺约1.0 厘米处，髂骨穿刺约1.5 厘米处)。用左手食指和中指固定在穿刺部位，以右手持针向骨面垂直刺入(胸骨穿刺则应保持针体与骨面成30°～40°角)，当针尖接触骨质后则将穿刺针围绕针体长轴左右旋转，缓缓钻刺骨质，当感到阻力消失，且穿刺针已固定在骨内时，表示已进入骨髓腔。 5.2.3拔出针芯，放于无菌盘内，接上干燥的10ml 或20ml 注射器，用适当力量抽取， 即有少量红色骨髓液进入注射器中，骨髓吸取量以0.1～0.2ml 为宜。

5.2.4将抽取的骨髓液滴于一载玻片上，再均匀推6～8 张涂片，送检细胞学检查。 5.2.5抽吸完毕，将针芯重新插入；左手取无菌纱布置于针孔处，右手将穿刺针连同针 芯一起拔出，随即将纱布盖于针孔上，并按压1～2 分钟，再用胶布固定纱布。 6.标本运输步骤：

6.1标本应立即送检，涂片标本如需暂时保存，须用95%酒精固定。送检时需附带填写详细的申请单，骨髓涂片及标本盒应标注有标本信息。

6.2标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。

6.3将扫描过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、 患者或环境的方式运送到实验室。

6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。 7.注意事项：

7.1骨髓标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名和检验项目，明 确标本要求。

7.2术前应作出凝血检查，有出血倾向者操作进应特别注意，血友病者禁忌。 7.3注射器及穿刺针必须干燥，以免发生溶血。

7.4穿刺针头进入骨质后，避免摆动过大，以免折断；胸骨穿刺不可用力过猛，以防穿 透内侧骨板。抽取液量如作细胞形态学检查不宜过多；如怀疑有败血症，则于涂片后， 再接上注射器抽取骨髓液1.0ml 送骨髓培养。骨髓液抽取后应立即涂片，否则会很快凝 固，使涂片失败。

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8.其它：如果采取骨髓时不顺，骨髓涂片混入过多外周血无法诊断时应告知送检科室， 必要时重新采样检验。

十二、临床微生物标本采集运输作业指导书

1.目的：采集标本以做临床微生物检验。

2.适用范围：适用于本科做临床微生物项目所需标本的采集。 3.物品准备：无菌试管、血培养瓶等。 4.检验申请项目要求：

检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。 5.各类微生物培养标本的采集： 5.1血液培养标本的采集：

首先打开瓶上的小塑料盖，再用75%酒精消毒瓶顶部，严格以无菌操作抽取血液，精确而迅速地将标本注入血培养瓶内，并轻轻摇匀，以防凝固，血液量应相当于培养液的十分之一，一般成人以5～10ml 为宜；儿童以2～5ml 为宜；为提高检出率，应在病人用药前或发热高峰时采取标本。 5.2尿液培养标本采集：

一般采集中段尿，嘱患者睡前少喝水或不喝水，清晨起床后用肥皂水及温开水洗外阴 部及尿道口，女性应分开大阴唇，男性应上翻包皮，仔细清洗，用无菌纱布拭干，令其 排尿，开始排出之尿弃去，而后采集中段尿约10ml 于无菌杯内立即送检。 5.3粪便培养标本采集：

一般细菌培养，挑取粪便粘液、脓血部分，液态便应挑取絮状物。难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采取直肠拭子，将棉棒用生理盐水或甘油缓冲盐水湿润，之后插入肛门内4～5cm(幼儿2～3cm)，轻轻转动一圈取出。标本留取后，应及时送检；防止尿液混入，以防降低检出阳性率。特殊培养应与实验室联系，按有关规定留取标本。 5.4痰液标本的采集：

5.4.1采集痰液标本以清晨为好，嘱患者先用温开水漱口数次，以除去口腔内大部分杂菌，然后用力咳出气管深部的痰液一口，吐入无菌痰杯内，立即送检。痰咳出困难时可先雾化吸入NaCL 溶液(100g／L，加温到45℃)使痰容易咳出。

5.4.2小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起 咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上即可送检。 5.5脓液及创面分泌物标本的采集：

5.5.1采取病灶处标本时，应尽量揩去病灶表面的污染菌，以免影响检验结果。用无 菌棉拭采取脓液及病灶分泌物于无菌培养管内送检，亦可用无菌手术采取组织碎片送检。

5.5.2脓样标本，最好用无菌注射器抽取脓液，打入无菌培养管内送检，如行切开排 脓亦可以用无菌棉拭采取标本送检。

5.6咽喉、鼻、耳、眼分泌物标本的采集：

以无菌棉拭采取患者喉部或鼻、耳、眼部分分泌物，立即送检。采集标本时应尽量 勿使棉拭接触唾液及口腔其他部位的粘膜，以防唾液的抑菌作用和杂菌污染。 5.7泌尿生殖道标本的采集：

5.7.1尿道分泌物：清洗尿道、采取尿道、溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入 尿道2～4cm 处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。

5.7.2阴道、宫颈分泌物：由妇产科医师通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或

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宫颈管1～2cm 处分泌物，置无菌试管中送检。

5.7.3前列腺液：清洗尿道后用前列腺按摩法采取前列腺液于无菌容器内送检。

5.7.4溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分 泌物，置无菌试管中送检。

6.标本运输：

6.1所有标本采集后应立即送检，标本不应置于冰箱内存放，以免细菌死亡而使培养阴 性。

6.2所有要送检的标本必须贴有样本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型 必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。 6.3标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。

6.4将扫描过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、 患者或环境的方式运送到实验室。

6.5 标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。 7.注意事项：

7.1微生物检验样本必须按要求采集转运，否则将影响检查结果。

7.2严格遵守标本采集的无菌操作流程，防止污染菌污染标本，造成结果的误差，误导 临床的诊断。

7.3某些标本离体极易死亡，采集后应立即保温送至实验室检验。室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低；不能使用冷藏的标本检验。

7.4厌氧菌标本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。

7.5尽量在抗生素应用前采集标本，以提高阳性检出率和避免漏检。如已用药，则应选 血液药物浓度最低水平时采样。

7.6痰标本应尽量留取清晨第一口痰，不可吐入唾液（仅是唾液，无送检意义）。注意在 留痰之前不要打开和接触容器内层以免污染，标本留取后立即将容器盖好并及时送检。 7.7阴道、宫颈分泌物标本采样应在非月经期进行，采样前3 天内不使用阴道内药物， 不冲洗阴道，24小时内不应有性行为。

7.8采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。 8.其它：如分析失败，分析原因并告知受检者重新采样检验。

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第五部分 标本采集运输流程

医师下达医嘱 护士执行医嘱，准备容器， 打印条形码，贴标签 需病人自己留取的标本， 需护士抽血的标本，由护 特殊标本由临床医生采集， 如尿液、粪便等，指导病 士按照采血要求统一采血 如脑脊液、胸腹水等 人按要求正确留取标本 采集后将标本 置于指定区域 由护士核对登记标本信息后，将标 本交给护工或自己送至检验科，由 工作人员核对标本信息 标本合格，接收标本 不合格标本拒收，在《不合格标本登记本》 作好登记及通知临床重新送检

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