内容发布更新时间 : 2024/5/9 3:41:16星期一 下面是文章的全部内容请认真阅读。

实验四 碱性蛋白酶活力的测定

一、实验原理

以酪蛋白为底物测定碱性蛋白酶的活力。酪蛋白经蛋白酶作用后，会降解成相对分子质量较小的肽和氨基酸，在反应混合物中加入三氯醋酸溶液，相对分子质量较大的蛋白质和肽就沉淀下来，相对分子质量较小的肽和氨基酸仍留在溶液中。溶解于三氯醋酸溶液中的肽的数量正比于酶的数量和反应时间。因而采用Folin法测定上清液中肽的含量就可以计算酶的活力。

二、试剂和仪器

试剂：0.1mol/L碳酸钠-碳酸氢钠缓冲液（pH10）、5%三氯醋酸、1%酪蛋白溶液（称取5g酪蛋白置于500mL 0.1mol/L碳酸钠-碳酸氢钠缓冲液（pH10）中，加热使其溶解）、0.4mol/L碳酸钠溶液、100μg/mL酪氨酸溶液、Folin试剂，稀释3倍使用

仪器：水浴锅、721分光光度计（含比色皿）、秒表、常规玻璃仪器

三、实验步骤

1、酶液的萃取

称取1g粗酶制剂置于研钵中，加少量缓冲液一起研磨，然后定容至100mL，从容量瓶中取出5mL酶液（视酶活而定）再定容至100mL，稀释后的酶液经滤纸过滤后得到澄清的酶液。 2、酶活力的测定

样品管：取不同量的酶液（0.1~1.0mL：0.2mL、0.4mL、0.6mL），用0.1mol/L碳酸钠-碳酸氢钠缓冲液（pH10）（对应为0.8mL、0.6mL、0.4mL）补足体积到1.0mL，然后在每个样品管中再加入1mL预先在40℃保温的1%酪蛋白溶液，混匀，在40℃准确保温10min，加入2mL 5%三氯醋酸溶液，迅速摇匀，于室温静置半小时。

空白管：先在每支试管中各加入1.0mL 1%酪蛋白溶液和2.0mL 5%三氯醋酸溶液，摇匀后，再加入1.0mL的酶液，酶液浓度分别与对应的样品管相同，在40℃下准确保温10min，以下操作同样品管。

将酶反应混合物过滤后收集滤液，在1mL滤液中加5mL 0.4mol/L碳酸钠溶

液和1mL Folin试剂，摇匀后在40℃恒温水浴中显色20 min，以相应的空白管中的反应液为对照，在680nm下测定样品管中反应液的吸光度。 3、标准曲线

为了确定酪氨酸与OD值的对应关系，需事先用不同浓度标准酪氨酸溶液与Folin试剂反应显色，测定OD值标准曲线。 （1）不同浓度的标准酪氨酸溶液按下表配置：

管号 酪氨酸的浓度 （微g/mL） 空白 1 2 3 4 5 6 0 10 20 30 40 50 60 100微g/mL 酪氨酸溶液（mL数） 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 蒸馏水 （mL数） 1 0.9 0.8 0.7 0.6 0.5 0.4 （2）向上表配制的不同浓度的酪氨酸溶液中分别加入0.4mol/L碳酸钠溶液5mL，Folin试剂1mL，置于40℃恒温水浴显色20min，在680nm下以空白为对照，测定各样品管溶液的吸光度。

（3）以吸光度（OD）为纵坐标，酪氨酸浓度为横坐标，绘制标准曲线，由直线斜率计算K值。

四、数据记录与处理

1、根据标准曲线计算K值

酪氨酸浓度/[μg/mL] 吸光度 0 0.000 10 0.078 20 0.177 30 0.286 40 0.361 50 0.403 60 0.533

用Excel拟合得，K=114.7（OD值为1时相当的微克数）。 2、酶活力计算

酶液加 入量/mL 0.2 0.4 0.6 相当于粗 酶制剂/克 0.0001 0.0002 0.0003 空白管 OD值 0.000 0.000 0.000 样品管 OD值 0.361 0.569 0.709 0.361 0.569 0.709 净OD值 酶活力/[*104单 位数/克酶制剂] 16.56 13.05 10.84 平均酶活力/[*104单位数/克酶制剂] 13.48 酶活力的计算：

酶活力（单位数/克酶制剂）=4/10×K×OD×n 式中：4——反应混合物总体积为4mL；

10——酶反应时间为10min；

K——标准曲线中OD值为1时相当的酪氨酸微克数，结果为114.7； n——酶液的稀释倍数

五、讨论

1、酶反应的温度、pH和时间对被水解的肽键数量有直接的影响，因此必须严格控制。

2、用三氯醋酸终止反应后，过滤反应混合物所得的滤液必须是澄清的。 3、因为Folin试剂对酸性环境比较敏感，容易发生变化，因此在测定时有顺序的规定，需要先加入碳酸钠溶液形成一个碱性环境，之后再加入Folin试剂，使其能正常发挥作用。